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Étude des Peptides et Protéines

Dec 13, 2024

Structure des Protéines

Chapitre 4 : Structure des Protéines

  • Professeur : M. Bouabdella H
  • Année : 2ème année Pharmacie, 2022 -2023

Plan Général

  • Les acides aminés
  • Les peptides
  • Les protéines

Les Peptides

I. Données Fondamentales

1. Peptides et Liaison Peptidique

  • Enchaînement d'acides aminés (AA) liés par des liaisons peptidiques.
  • Liaison peptidique :
    • Liaison covalente amide entre le groupement COOH d'un AA et le groupe NH2 d'un autre AA.
    • Formation d'une liaison covalente par élimination d'une molécule d'eau.
    • Structure plane et rigide.
  • Géométrie de la liaison peptidique :
    • 6 atomes coplanaires, formant une structure en parallélogramme.
    • Structure rigide avec possibilité de torsions autour des liaisons C-N et C-C : formation de structures secondaires comme hélices et feuillets.
    • Diagramme de Ramachandran pour déterminer les combinaisons d'angles autorisées.

2. Propriétés Acido-basiques

  • Peptides peuvent être protonés ou non en fonction des pKa des fonctions ionisables.
  • pHi dépend des pKa des radicaux (Asp, Glu, Lys, Arg, His) et des groupements N-terminal et C-terminal.

3. Détermination de la Structure des Chaînes Peptidiques

  • Méthodes pour déterminer l'AA N-terminal :
    • Sanger : DiNitro Fluoro Benzene
    • Edman : phénylisothiocyanate
    • Dansylation
    • Aminopeptidase
  • Méthodes pour déterminer l'AA C-terminal :
    • Enzymatiques : Carboxypeptidase A et B
    • Chimiques : LiBH4 et hydrazinolyse
  • Fragmentation des chaînes peptidiques : Trypsine, Chymotrypsine, Bromure de cyanogène, Pepsine, Thermolysine pour analyser les séquences.

La détermination de la structure des chaînes peptidiques implique plusieurs étapes clés. Tout d'abord, il faut identifier l'acide aminé (AA) N-terminal et l'acide aminé C-terminal. Ensuite, il faut déterminer l'ordre d'enchaînement des autres acides aminés.

Pour déterminer l'AA N-terminal, plusieurs méthodes sont disponibles :

  • Méthode de Sanger: Elle utilise le dinitrofluorobenzène (DNFB) qui réagit spécifiquement avec le groupement aminé libre de l'AA N-terminal. Cela produit un dérivé DNP-AA1 (jaune) facilement identifiable, laissant le reste de la chaîne peptidique intacte.

  • Méthode d'Edman: Cette méthode utilise le phénylisothiocyanate (PTC). En milieu alcalin (pH 9), le PTC réagit avec l'AA N-terminal formant un PTC-peptide. En milieu acide, le PTC-peptide subit une cyclisation, libérant un dérivé PTH-AA1 (détectable en UV) et un peptide raccourci (n-1 résidus). Ce processus peut être répété de manière séquentielle pour déterminer la séquence complète si la chaîne est assez courte.

  • Méthode de dansylation: Elle utilise le chlorure de dansyle qui réagit avec l'AA N-terminal, produisant un dérivé fluorescent facilement détectable.

  • Méthode enzymatique avec l'aminopeptidase: Cette enzyme hydrolyse spécifiquement la liaison peptidique impliquant l'AA N-terminal, libérant ainsi cet AA.

Pour déterminer l'AA C-terminal, on peut utiliser des méthodes enzymatiques ou chimiques :

  • Méthodes enzymatiques: La carboxypeptidase A hydrolyse la liaison peptidique impliquant l'AA C-terminal, sauf si l'avant-dernier résidu est une proline. La carboxypeptidase B libère spécifiquement les AA C-terminaux basiques (arginine et lysine), à condition que l'avant-dernier résidu ne soit pas une proline.

  • Méthodes chimiques: Le LiBH4 réduit le groupement acide carboxylique de l'AA C-terminal en fonction alcool primaire. L'hydrazinolyse rompt toutes les liaisons peptidiques, transformant tous les AA en hydrazides sauf l'AA C-terminal, qui reste intact.

Pour déterminer l'ordre d'enchaînement des AA restants, la chaîne peptidique est fragmentée en utilisant des enzymes spécifiques :

  • Trypsine: Coupe spécifiquement après les résidus basiques arginine et lysine. Après traitement à l'éthylène imine, elle peut aussi couper après la cystéine.

  • Chymotrypsine: Coupe spécifiquement après les résidus aromatiques phénylalanine, tyrosine et tryptophane.

  • Bromure de cyanogène: Coupe après les résidus méthionine, les transformant en résidus homosérine lactone.

  • Pepsine: Moins spécifique que la trypsine, elle coupe avant les résidus aromatiques phénylalanine, tyrosine et tryptophane.

  • Thermolysine: Coupe avant les résidus leucine, isoleucine et valine.

Après fragmentation, les fragments obtenus sont analysés par la méthode d'Edman (ou autres méthodes de détermination de l’AA N-terminal), permettant de déterminer la séquence de chaque fragment. En assemblant l'information provenant des fragments, la séquence complète de la chaîne peptidique est reconstituée.

IV. Peptides d'Intérêt Biologique

1. Glutathion (GSH)

  • Puissant antioxydant éliminant les radicaux libres toxiques.
  • Nécessite régénération via NADPH,H+.
  • Déficit en G6PDH peut causer des troubles cellulaires et anémie hémolytique.

2. Autres Peptides

  • Ocytocine : hormone pour contractions utérines et lactation.
  • Vasopressine (ADH) : hormone antidiurétique, effet sur la pression sanguine.
  • Insuline : régule le métabolisme du glucose, hormone hypoglycémiante.
  • Glucagon : régule le métabolisme du glucose, hormone hyperglycémiante.
  • Enképhalines : neurotransmetteurs contrôlant la douleur. Deux types : Leu-enképhaline et Met-enképhaline.