Dec 13, 2024
La détermination de la structure des chaînes peptidiques implique plusieurs étapes clés. Tout d'abord, il faut identifier l'acide aminé (AA) N-terminal et l'acide aminé C-terminal. Ensuite, il faut déterminer l'ordre d'enchaînement des autres acides aminés.
Pour déterminer l'AA N-terminal, plusieurs méthodes sont disponibles :
Méthode de Sanger: Elle utilise le dinitrofluorobenzène (DNFB) qui réagit spécifiquement avec le groupement aminé libre de l'AA N-terminal. Cela produit un dérivé DNP-AA1 (jaune) facilement identifiable, laissant le reste de la chaîne peptidique intacte.
Méthode d'Edman: Cette méthode utilise le phénylisothiocyanate (PTC). En milieu alcalin (pH 9), le PTC réagit avec l'AA N-terminal formant un PTC-peptide. En milieu acide, le PTC-peptide subit une cyclisation, libérant un dérivé PTH-AA1 (détectable en UV) et un peptide raccourci (n-1 résidus). Ce processus peut être répété de manière séquentielle pour déterminer la séquence complète si la chaîne est assez courte.
Méthode de dansylation: Elle utilise le chlorure de dansyle qui réagit avec l'AA N-terminal, produisant un dérivé fluorescent facilement détectable.
Méthode enzymatique avec l'aminopeptidase: Cette enzyme hydrolyse spécifiquement la liaison peptidique impliquant l'AA N-terminal, libérant ainsi cet AA.
Pour déterminer l'AA C-terminal, on peut utiliser des méthodes enzymatiques ou chimiques :
Méthodes enzymatiques: La carboxypeptidase A hydrolyse la liaison peptidique impliquant l'AA C-terminal, sauf si l'avant-dernier résidu est une proline. La carboxypeptidase B libère spécifiquement les AA C-terminaux basiques (arginine et lysine), à condition que l'avant-dernier résidu ne soit pas une proline.
Méthodes chimiques: Le LiBH4 réduit le groupement acide carboxylique de l'AA C-terminal en fonction alcool primaire. L'hydrazinolyse rompt toutes les liaisons peptidiques, transformant tous les AA en hydrazides sauf l'AA C-terminal, qui reste intact.
Pour déterminer l'ordre d'enchaînement des AA restants, la chaîne peptidique est fragmentée en utilisant des enzymes spécifiques :
Trypsine: Coupe spécifiquement après les résidus basiques arginine et lysine. Après traitement à l'éthylène imine, elle peut aussi couper après la cystéine.
Chymotrypsine: Coupe spécifiquement après les résidus aromatiques phénylalanine, tyrosine et tryptophane.
Bromure de cyanogène: Coupe après les résidus méthionine, les transformant en résidus homosérine lactone.
Pepsine: Moins spécifique que la trypsine, elle coupe avant les résidus aromatiques phénylalanine, tyrosine et tryptophane.
Thermolysine: Coupe avant les résidus leucine, isoleucine et valine.
Après fragmentation, les fragments obtenus sont analysés par la méthode d'Edman (ou autres méthodes de détermination de l’AA N-terminal), permettant de déterminer la séquence de chaque fragment. En assemblant l'information provenant des fragments, la séquence complète de la chaîne peptidique est reconstituée.